UC
BIOLOGÍA CELULAR Y MOLECULAR

OLIVA OLAVE,CARLOS ANDRÉS

Carlos AndrÉs Oliva Olave Carlos Andrés Oliva Olave

Laboratorio:
Mail: Esta dirección de correo electrónico está protegida contra spambots. Usted necesita tener Javascript activado para poder verla.


Profesor Asistente

Laboratorio de Neurodesarrollo

BIOLOGÍA CELULAR Y MOLECULAR,
Facultad de Ciencias Biológicas,
Pontificia Universidad Católica de Chile, Alameda 340, Santiago, Chile.

Antecedentes Académicos

Doctor (en Ciencias Biomédicas) , Universidad de Chile (2011).

Postdoctorado:

Facultad de Medicina, Centro de Neurociencia Biomédica , Universidad de Chile (2017).
Facultad de Medicina, Laboratory of Neurogenetics, Katholieke Universiteit Leuven, Bélgica (2014).

Especialización:

Biología Celular.

Premios y Distinciones

  • Beca Chile de Postdoctorado, CONYCIT, Gobierno de Chile (2014).
  • Beca CONICYT para estudiantes de Doctorado, Gobierno de Chile (2009).
  • Matrícula de Honor, Pontificia Universidad Católica de Chile (2002).

Actividades de Docencia

Pregado
  • 2018 BIO297C-1, Laboratorio Bioquimica, Biologia Celular.
  • 2018 BIO141C-1, Biologia De La Celula.
Postgrado

El desarrollo del sistema nervioso se inicia en el embrión temprano cuando el ectodermo da origen al neuroepitelio. Luego una serie de vías de señalización organizan el tejido y comienzan a visualizarse los precursores que darán origen a los diferentes tipos de neuronas y células gliales. Posterior a su nacimiento, las neuronas comienzan a generar prolongaciones celulares que darán origen a lo que conocemos como axones y dendritas, que son la base para la comunicación entre neuronas a través de uniones sinápticas y forman circuitos que son la base para el funcionamiento del sistema nervioso. La formación y guía de estas proyecciones es un proceso que aún no se comprende totalmente y los defectos en su formación producen enfermedades en los individuos afectados. En nuestro laboratorio usamos como modelo a la mosca Drosophila melanogaster (mosca del vinagre) para estudiar los procesos moleculares y celulares involucrados en la formación de axones y dendritas. Los procesos de guía axonal y dendrítica están regulados por vías de señalización que actúan principalmente en el cono de crecimiento, estructura celular especializada que se encuentra en los extremos de los axones y dendritas en crecimiento y que cuenta con receptores que le permiten sensar y responder a factores del microambiente.

Nuestro objetivo es entender cómo se desarrolla el sistema nervioso y cómo factores genéticos y ambientales pueden afectar el desarrollo normal.

Nosotros nos enfocamos en las siguientes líneas de investigación para entender cómo ocurre la guía axonal-dendrítica y cómo este proceso puede ser afectado en enfermedades genéticas o por factores ambientales.

1. Caracterización de vías de señalización involucradas en la guía axonal y dendrítica

Los procesos de guía axonal y dendrítica involucran la modificación de las respuestas del cono de crecimiento, el cual posee en su membrana los receptores que le permiten censar señales de su entorno. Estas señales pueden ser secretadas o unidas a membrana y ayudan al cono de crecimiento a identificar hacia donde debe ir. En el laboratorio nos estamos enfocando en la vía de señalización Slit-Robo y su participación en la guía de axones y dendritas en el lóbulo óptico de la mosca. Queremos entender cómo esta vía funciona para regular la formación de esta estructura y adicionalmente, estamos interesados en encontrar nuevos componentes que regulen su funcionamiento.

2. Mutaciones en genes identificados a partir de estudios clínicos como factores de riesgo para el desarrollo de enfermedades neuropsiquiátricas y su efecto en los procesos de guía axonal y dendrítica

Se sabe que varias enfermedades neuropsiquiátricas tienen su origen durante el desarrollo o durante procesos de remodelación de circuitos neurales que ocurren durante la adolescencia. La masificación de las técnicas de secuenciación del genoma ha permitido obtener secuencias completas de una gran cantidad pacientes que padecen estas enfermedades. Esto ha dado lugar a una extensa base de datos genes candidatos cuya mutación presentaría factores de riesgo para el desarrollo de dichas enfermedades. Nosotros estamos usando Drosophila para caracterizar la función en el desarrollo del sistema nervioso de genes que aparecen como factores de riesgo en estos estudios pero que su función no ha sido descrita previamente. Además estamos interesados en estudiar si variantes genéticas descritas en estos estudios presentan defectos en la función de las proteínas que codifican.

3. Efecto del etanol en el desarrollo del sistema nervioso usando un modelo del síndrome de alcohol fetal

El alcohol es la droga más consumida por la población en Chile, el consumo se estima en un 48.9% de la población y siendo un 21% clasificado como consumo intenso. Este consumo presenta su mayor prevalencia en jóvenes. En los últimos años se ha visto un aumento en el consumo en mujeres, además entre un 20 y un 65% lo ha consumido en algún momento del embarazo y entre un 5 y 10% en cantidades que constituyen un riesgo para el feto. El espectro de problemas que puede ocasionar la exposición del feto a alcohol se engloba en lo que se ha denominado espectro de desórdenes de alcohol fetal. Dado que sigue habiendo una alta prevalencia de estos problemas, entender mejor cuáles son los efectos que produce el alcohol en el desarrollo del sistema nervioso es muy relevante para el diseño de posibles tratamientos. Nosotros proponemos aprovechar un modelo de síndrome de alcohol fetal recientemente desarrollado en la mosca, para evaluar los efectos del etanol en el desarrollo del sistema nerviosos y estudiar la interacción entre genes y ambiente aprovechando las herramientas genéticas disponibles en este modelo.


Titulo: Characterization Of The Function Of The Slit/robo Signaling Pathway In The Morphogenesis Of The Optic Lobe Of Drosophila Melanogaster
Año: 2015
Concurso e institución: Iniciación, CONICYT
Investigador principal: Oliva Olave Carlos Andres
Otros investigadores: Oliva Olave Carlos Andres
Fecha inicio: 01-10-2015
Fecha termino: 01-10-2018
Duración: 36 meses


Publicaciones ISI

1
Chaski, A Novel Drosophila Lactate/pyruvate Transporter Required In Glia Cells For Survival Under Nutritional Stress.
Autor(es): Delgado Mg, Oliva C, Lopez E, Ibacache A, Galaz A, Delgado R, Barros Lf, Sierralta J
Año: 2018.1:1186-na.10.1038/s41598-018-19595-5
Ref: Delgado MG, Oliva C, López E, Ibacache A, Galaz A, Delgado R, Barros LF, Sierralta J. Chaski, a novel Drosophila lactate/pyruvate transporter required in glia cells for survival under nutritional stress.. Scientific Reports. 2018;1(8):1186-na.

2
Receptor Tyrosine Kinases And Phosphatases In Neuronal Wiring: Insights From Drosophila
Autor(es): Oliva C, Hassan Ba
Año: 2017.123:399-432.10.1016/bs.ctdb.2016.10.003
Ref: Oliva C, Hassan BA. Receptor Tyrosine Kinases and Phosphatases in Neuronal Wiring: Insights From Drosophila. Current Topics In Developmental Biology. 2017;123(1):399-432.

3
Regulation Of Drosophila Brain Wiring By Neuropil Interactions Via A Slit-Robo-Rptp Signaling Complex
Autor(es): Oliva C, Soldano A, Mora N, De Geest N, Claeys A, Erfurth Ml, Sierralta J, Ramaekers A, Dascenco D, Ejsmont Rk, Schmucker D, Sanchez-Soriano N, Hassan Ba
Año: 2016.39:267-278.10.1016/j.devcel.2016.09.028
Ref: Oliva C, Soldano A, Mora N, De Geest N, Claeys A, Erfurth ML, Sierralta J, Ramaekers A, Dascenco D, Ejsmont RK, Schmucker D, Sanchez-Soriano N, Hassan BA. Regulation of Drosophila brain wiring by neuropil interactions via a Slit-Robo-RPTP signaling complex. Developmental Cell. 2016;39(2):267-278.

4
The Specification Of Cortical Subcerebral Projection Neurons Depends On The Direct Repression Of Tbr1 By Ctip1/bcl11A
Autor(es): Canovas J, Berndt Fa, Sepulveda H, Aguilar R, Veloso Fa, Montecino M, Oliva C, Maass Jc, Sierralta J, Kukuljan M
Año: 2015.35:7552-7564.10.1523/JNEUROSCI.0169-15.2015
Ref: Cánovas J, Berndt FA, Sepúlveda H, Aguilar R, Veloso FA, Montecino M, Oliva C, Maass JC, Sierralta J, Kukuljan M. The Specification of Cortical Subcerebral Projection Neurons Depends on the Direct Repression of TBR1 by CTIP1/BCL11a. Journal Of Neuroscience. 2015;35(19):7552-7564.

5
Hindsight Regulates Photoreceptor Axon Targeting Through Transcriptional Control Of Jitterbug/filamin And Multiple Genes Involved In Axon Guidance In Drosophila.
Autor(es): Oliva C, Molina-Fernandez C, Maureira M, Candia N, Lopez E, Hassan B, Aerts S, Canovas J, Olguin P, Sierralta J
Año: 2015.75:1018-1032.10.1002/dneu.22271
Ref: Oliva C, Molina-Fernandez C, Maureira M, Candia N, López E, Hassan B, Aerts S, Cánovas J, Olguín P, Sierralta J. Hindsight regulates photoreceptor axon targeting through transcriptional control of jitterbug/Filamin and multiple genes involved in axon guidance in Drosophila.. Developmental Neurobiology. 2015;75(9):1018-1032.

6
Regulation Of Branching Dynamics By Axon-Intrinsic Asymmetries In Tyrosine Kinase Receptor Signaling.
Autor(es): Zschatzsch M, Oliva C, Langen M, De Geest N, Ozel Mn, Williamson Wr, Lemon Wc, Soldano A, Munck S, Hiesinger Pr, Sanchez-Soriano N, Hassan Ba
Año: 2014.3:e01699-na.10.7554/eLife.01699
Ref: Zschätzsch M, Oliva C, Langen M, De Geest N, Ozel MN, Williamson WR, Lemon WC, Soldano A, Munck S, Hiesinger PR, Sanchez-Soriano N, Hassan BA. Regulation of branching dynamics by axon-intrinsic asymmetries in Tyrosine Kinase Receptor signaling.. Elife. 2014;3(1):e01699-na.

7
Proper Connectivity Of Drosophila Motion Detector Neurons Requires Atonal Function In Progenitor Cells.
Autor(es): Oliva C, Choi Cm, Nicolai Lj, Mora N, De Geest N, Hassan Ba
Año: 2014.9:4-na.10.1186/1749-8104-9-4
Ref: Oliva C, Choi CM, Nicolai LJ, Mora N, De Geest N, Hassan BA. Proper connectivity of Drosophila motion detector neurons requires Atonal function in progenitor cells.. Neural Development. 2014;9(1):4-na.

8
Role Of The Maguk Protein Family In Synapse Formation And Function.
Autor(es): Oliva C, Escobedo P, Astorga C, Molina C, Sierralta J
Año: 2012.72:57-72.10.1002/dneu.20949
Ref: Oliva C, Escobedo P, Astorga C, Molina C, Sierralta J. Role of the MAGUK protein family in synapse formation and function.. Developmental Neurobiology. 2012;72(1):57-72.

9
Regulation Of Axonal Development By The Nuclear Protein Hindsight (Pebbled) In The Drosophila Visual System.
Autor(es): Oliva C, Sierralta J
Año: 2010.344:911-921.10.1016/j.ydbio.2010.06.007
Ref: Oliva C, Sierralta J. Regulation of axonal development by the nuclear protein hindsight (pebbled) in the Drosophila visual system.. Developmental Biology. 2010;344(2):911-921.

10
Temporal And Spatial Expression Of Drosophila Dlgs97 During Neural Development.
Autor(es): Albornoz V, Mendoza-Topaz C, Oliva C, Tello J, Olguin P, Sierralta J
Año: 2008.8:443-451.10.1016/j.gep.2008.04.001
Ref: Albornoz V, Mendoza-Topaz C, Oliva C, Tello J, Olguín P, Sierralta J. Temporal and spatial expression of Drosophila DLGS97 during neural development.. Gene Expression Patterns. 2008;8(6):443-451.

11
Syndecan-4 Regulates Non-Canonical Wnt Signalling And Is Essential For Convergent And Extension Movements In Xenopus Embryos.
Autor(es): Munoz R, Moreno M, Oliva C, Orbenes C, Larrain J
Año: 2006.8:492-500.10.1038/ncb1399
Ref: Muñoz R, Moreno M, Oliva C, Orbenes C, Larraín J. Syndecan-4 regulates non-canonical Wnt signalling and is essential for convergent and extension movements in Xenopus embryos.. Nature Cell Biology. 2006;8(5):492-500.

12
Heparan Sulfate Proteoglycans Exert Positive And Negative Effects In Shh Activity.
Autor(es): Carrasco H, Olivares Gh, Faunes F, Oliva C, Larrain J
Año: 2005.96:831-838.10.1002/jcb.20586
Ref: Carrasco H, Olivares GH, Faunes F, Oliva C, Larraín J. Heparan sulfate proteoglycans exert positive and negative effects in Shh activity.. Journal Of Cellular Biochemistry. 2005;96(4):831-838.



Libros y Capitulos de Libros


Maguk
Autor(es): Carlos Oliva, Jimena Sierralta
Año: 2017:1-7.
Ref: Carlos Oliva, Jimena Sierralta. MAGUK. In: Sangdun Choi,editors. Encyclopedia of Signaling Molecules. Springer New York; 2017. p. 1-7.